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        Rad51雙鏈DNA結(jié)合能力決定復制叉修復通路選擇:E135D與K305N突變揭示同源重組與突變合成通路轉(zhuǎn)換的關鍵機制

        《Nature Communications》:Rad51 determines pathway usage in post-replication repair

        【字體: 時間:2026年01月11日 來源:Nature Communications 15.7

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          復制叉停滯后的修復通路如何“排班”一直成謎。UC Davis團隊鎖定酵母Rad51,發(fā)現(xiàn)E135D、K305N兩突變大幅削弱其對dsDNA的親和力,卻保留ssDNA結(jié)合與D-loop活性,導致MMS誘導的 fork 保護失效、突變率飆升,并迫使細胞轉(zhuǎn)向TLS與Rad51非依賴的模板轉(zhuǎn)換。該工作首次直接證實Rad51-dsDNA相互作用是調(diào)控post-replication repair通路分配的核心“開關”,為解析BRCA1/2缺陷腫瘤對PARPi耐藥機制提供新視角。

          
        當DNA復制機遇上“路障”,細胞必須在“精準修復”與“快速繞過”之間做出抉擇。若選擇失誤,基因組不穩(wěn)定性與突變負荷將急劇攀升,驅(qū)動腫瘤發(fā)生與耐藥。然而,調(diào)控這一命運決定的分子“交通燈”長期模糊不清:停滯復制叉究竟如何決定啟用同源重組(HR)進行高保真模板轉(zhuǎn)換,還是啟用易錯性的跨損傷合成(TLS)?Rad51作為HR核心酶,其經(jīng)典功能被認為是結(jié)合單鏈DNA(ssDNA)形成核蛋白纖維,執(zhí)行同源搜索與鏈侵入;但近年哺乳動物研究提示,Rad51還能保護新生DNA免受MRE11、EXO1、DNA2等核酸酶“誤傷”,且該功能不依賴HR下游因子Rad54。令人費解的是,真核Rad51與細菌RecA最大區(qū)別之一在于其對雙鏈DNA(dsDNA)具有顯著親和力,這一“額外技能”究竟為何演化而來?是否正是決定修復通路取向的“隱藏開關”?為回答上述問題,美國加州大學Davis分校Wolf-Dietrich Heyer團隊在釀酒酵母中開展系統(tǒng)研究,相關成果發(fā)表于《Nature Communications》。
        作者首先以rad51Δrad54ts雙突變對甲基磺酸甲酯(MMS)極度敏感為背景,通過高拷貝質(zhì)粒隨機突變篩選,捕獲兩株能“逆襲”MMS敏感表型的Rad51突變體:Rad51-E135D(ED)與Rad51-K305N(KN)。將突變原位敲入基因組后,ED突變呈現(xiàn)與rad51Δ相當?shù)腗MS敏感性,KN則僅輕度敏感;兩突變均無法再度抑制rad54Δ的敏感表型,提示其并非簡單繞過Rad54,而是改變修復通路分配。
        為揭示機制,作者整合多學科技術:生化層面,純化野生型與突變蛋白,采用電泳遷移率變動(EMSA)、鹽滴定STM、負染電鏡及ATP酶測定,定量比較DNA結(jié)合與纖維形成;細胞生物學層面,利用免疫熒光、染色質(zhì)內(nèi)切酶切割(ChEC)與2D凝膠電鏡,追蹤Rad51在MMS阻滯叉上的招募及姐妹染色單體連接(SCJ)形成;遺傳學層面,通過CAN1正向突變、iDamage單損傷整合及多位點表型互作,評估TLS與模板轉(zhuǎn)換通路的相對貢獻;體外重組體系,重建RPA-Rad51-Rad54介導的D-loop反應,評估鏈侵入活性;同時構建exo1Δ、mms2Δ、rev3Δ、pol30-K127R-K164R(KKRR)等背景,剖析通路交叉。
        主要結(jié)果如下:
        Rad51突變體分離與MMS敏感性驗證
        通過高拷貝抑制篩選獲得ED與KN,二者在染色體水平均無法彌補rad54Δ,卻使細胞對MMS表現(xiàn)出梯度敏感,提示復制叉修復失衡。
        rad51-ED與rad51-KN在姐妹染色單體重組中基本正常
        直接重復序列報告系統(tǒng)顯示,兩突變體自發(fā)與HO誘導的姐妹染色單體基因轉(zhuǎn)換頻率與野生型無顯著差異,亦不能恢復rad54Δ的缺陷,表明短程HR未受明顯影響。
        rad51-ED與rad51-KN在全基因組同源搜索中嚴重受損
        D-loop捕獲(DLC)與斷裂誘導復制(BIR)實驗顯示,ED與KN在染色體V-XI間形成D-loop及BIR產(chǎn)物效率分別下降5-10倍,提示長程纖維或基因組尺度搜索受阻。
        Rad51-ED與Rad51-KN蛋白對dsDNA結(jié)合顯著減弱
        EMSA與STM顯示,野生型Rad51對100bp dsDNA的Kd≈500nM,而兩突變體在100mM NaCl下幾乎無法形成穩(wěn)定復合物;電鏡亦顯示其在1kb dsDNA上形成>200nm長纖維的能力下降≥70%,但對ssDNA親和力僅輕度降低。
        Rad51-ED與Rad51-KN ATP酶活性降低但仍能完成D-loop
        在200mM NaCl條件下,ED與KN水解ATP速率下降30-50%,與dsDNA結(jié)合缺陷一致;然而,在50-100mM NaCl的D-loop重建實驗中,二者在Rad54輔助下生成D-loop的峰值與野生型相當,說明催化鏈侵入的核心功能仍保留。
        Rad51-ED與Rad51-KN喪失保護dsDNA免受核酸酶降解的能力
        體外降解實驗顯示,野生型Rad51可抑制Exo1及Sgs1-Dna2對100bp dsDNA的切割≥80%,而ED與KN在4μM濃度下幾乎無保護作用,直接證實dsDNA結(jié)合是“盾牌”功能的基礎。
        rad51-ED與rad51-KN與TLS及模板轉(zhuǎn)換突變體呈現(xiàn)協(xié)同敏感
        在0.0033%MMS下,ED與rev3Δ、 mms2Δ或pol30-KKRR組合表現(xiàn)出“雪上加霜”的生長缺陷,KN雖單突變耐受,但與上述突變組合亦顯著增敏,提示突變體已將修復負荷強制轉(zhuǎn)向TLS與PCNA-多泛素化依賴的模板轉(zhuǎn)換(推測為叉倒退)。
        rad51-ED與rad51-KN顯著提高自發(fā)突變率
        CAN1檢測顯示,ED與KN分別使突變率上升9倍與6倍,與rad51Δ、rad54Δ處于同一水平,且依賴Rev3,證明TLS被過度征用。
        iDamage單損傷整合揭示TLS比例升高、模板轉(zhuǎn)換下降
        在TT(6-4)光產(chǎn)物與N2-dG-AAF損傷模型中,野生型TLS占比約5-17%,模板轉(zhuǎn)換(DA)為余量;rad51Δ使TLS翻倍,ED與KN表現(xiàn)相同趨勢,進一步量化證明通路切換。
        Rad51-ED嚴重削弱在MMS阻滯叉上的招募與SCJ形成
        ChEC顯示,ED-MN融合蛋白在0.05%MMS處理2h后幾乎不切割基因組DNA,KN-MN切割水平與野生型一致;2D凝膠定量則表明,ED使sgs1Δ背景SCJ積累降至20%,KN降至60%,直接說明dsDNA結(jié)合缺陷導致Rad51無法有效錨定并穩(wěn)定停滯叉。
        綜上,作者提出“Rad51-dsDNA結(jié)合是復制叉修復通路分配開關”的新模型:真核Rad51通過高親和力結(jié)合dsDNA,在ssDNA-dsDNA交界處或叉倒退結(jié)構形成“護DNA盾”,阻止Exo1、Dna2-Sgs1等核酸酶過度修剪;一旦該功能因E135D、K305N等突變喪失,復制叉穩(wěn)定性下降,長程HR纖維難以延伸,細胞被迫調(diào)用TLS及Rad5介導的叉倒退通路,雖可解燃眉之急,卻伴隨突變負荷顯著增加。該發(fā)現(xiàn)不僅解釋了真核Rad51為何保留強dsDNA結(jié)合能力這一進化謎題,也為理解BRCA1/2缺失、RAD51-S181P等臨床突變導致基因組不穩(wěn)定與PARP抑制劑耐藥提供了機制線索,提示靶向Rad51-dsDNA界面或調(diào)控其纖維長度可能成為增強腫瘤化療敏感性、降低獲得性突變的新策略。
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