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全新的蛋白相互作用分析工具:NanoBRET™ 技術[新品推薦]
【字體: 大 中 小 】 時間:2015年12月21日 來源:生物通
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Promega對BRET方法進行大幅改良。它使用NanoLuc® 螢光素酶作為能量供體,而HaloTag® 蛋白標記的NanoBRET™ 618熒光基團作為能量受體,帶來了最新的NanoBRET™ 技術。
在細胞中,蛋白質并不是孤單的個體。大多數蛋白通過與分子伴侶或其他蛋白形成復合物而發揮其功能。因此,在了解細胞的生物學特性時,蛋白質相互作用(PPI)研究就成了重要一環。在藥物開發的過程中,這一信息也至關重要,有助于確認藥物靶點。
一提起蛋白質相互作用研究,你的腦海中可能馬上浮現出:酵母雙雜交、免疫共沉淀等技術。的確,這些都是經典方法,可有效檢測體內體外蛋白質相互作用。然而,它們不能提供動態的蛋白相互作用信息,似乎還缺乏一些說服力。基于此,共振能量轉移這種方法受到人們的青睞。這種能量轉移有著嚴格的距離限制(< 10 nm),特別適合評估蛋白質的相互作用。
它的原理并不復雜,就是兩個蛋白分子靠近時,激發態能量從一個熒光基團轉移到另一個。生物發光共振能量轉移(BRET)和熒光共振能量轉移(FRET)都屬于這種方法。它們的主要區別在于,FRET涉及到兩個熒光基團之間的能量轉移,其中一個需要適當光源的外部激發,而BRET在底物被氧化之后發生,因此不需要外部激發。如此看來,BRET相對FRET有不少優點,比如無需激發光,背景更低,也避免了光漂白和自發熒光等問題。
BRET最初是在海洋生物中觀察到的,如水母和海腎。之后,人們將其用于動物和植物研究。在BRET技術中,蛋白A融合螢光素酶(通常是海腎螢光素酶),作為能量供體,蛋白B則融合帶有熒光基團的標簽蛋白,作為能量受體。如果蛋白A和B存在相互作用,加入螢光素酶底物后,螢光素酶發光可以激發鄰近的蛋白B的熒光基團發光。如果沒有相互作用,那就沒有熒光咯。
大幅改良的BRET平臺
目前,人們大多使用海腎螢光素酶(Rluc)作為能量供體,黃色熒光蛋白(YFP)作為能量受體,在這之間實現能量轉移。然而,Rluc和YFP的光譜接近,產生了明顯的背景。這種高背景增加了檢測噪音,也降低了靈敏度和動態范圍。
于是,Promega對BRET方法進行大幅改良。它使用NanoLuc® 螢光素酶作為能量供體,而HaloTag® 蛋白標記的NanoBRET™ 618熒光基團作為能量受體,帶來了最新的NanoBRET™ 技術。
集兩大專利于一身的NanoBRET™,可不是鬧著玩的。NanoLuc® 螢光素酶的分子量僅為19 kDa(171個氨基酸),更適合于構建融合蛋白。別看它小,它的光信號比海腎螢光素酶高兩個數量級,因此極少量也能準確定量,特別適合細胞水平蛋白相互作用的研究。
至于能量受體,Promega利用HaloTag® 蛋白標簽技術來構建。在評估了一系列熒光基團之后,他們選擇了NanoBRET™ 618配基。它與NanoLuc® 的波長配對更加,使得檢測數據更加出眾。于是,來自NanoLuc® 供體的明亮的藍移發光信號耦合到遠紅移的HaloTag® 受體上后,光譜疊加更佳、信號更強、且與傳統的BRET分析相比背景更低。

如何構建載體?
也許你接著要問,NanoBRET™ 性能不錯,但操作起來會不會很麻煩。如果你想省時省力,可以選擇預構建載體。NanoBRET™ 預構建載體融合了已知相互作用的蛋白的基因,無需你再自行構建載體,可直接用于轉染,進行藥物作用機理及其他相關的機制研究。
Promega目前提供了許多經過優化的NanoBRET™ 檢測,包括表觀遺傳學檢測,可研究溴結構域(bromodomain)與組蛋白的相互作用。此外,轉錄蛋白、信號蛋白和膜蛋白等方面也有不少產品,具體可登陸Promega的網站查詢(www.promega.com)。
如果這其中沒有你的研究目標,也不必遺憾,自行構建就是了。相信對大家來說,這種克隆是so easy,況且Promega也提供了方便的Flexi 載體克隆系統。這是一種定向克隆技術,基于兩個稀有酶切位點的限制性內切酶,SgfI和PmeI。它能夠快速、高效、高保真性地在不同 Flexi 載體間轉移蛋白編碼區,而無需重新測序。
NanoBRET™ PPI Flexi Starter System 就以Flexi 載體為基礎,提供了蛋白相互作用檢測的解決方案,包括載體,檢測試劑及陽性對照。這個過程很簡單,就是經典的酶切連接過程,也不需要構建入門載體。由于載體本身在SgfI和PmeI酶切位點之間是一個致死基因,這使得陽性克隆的幾率大大增加,但也帶來載體保存的問題。我們無法復制,只能每次向廠家購買。
當然,你也可以選擇另一個常規方案,利用多克隆位點(MCS)來克隆。Promega的NanoBRET™ PPI MCS Starter System提供帶有多克隆位點的NanoLuc® 融合蛋白克隆載體和HaloTag® 融合蛋白載體,以及檢測試劑和陽性對照。這些組分也可以單獨購買。
別人怎么用?
研究人員已經利用NanoBRET™ 技術發表了不少文章。今年1月,清華大學和賓夕法尼亞大學的研究人員在研究Rabin8的蛋白構象是否起著自抑制作用時,就使用了NanoBRET™ 技術1。
Rab蛋白是Ras超家族中的一類,也是一類低分子量的GTP結合蛋白(大約20-29 kDa),它們負責調控真核細胞的囊泡運輸等過程。其中,Rab8是胞吐作用的一個關鍵調控因子。Rabin8是一種鳥苷酸交換因子(GEF),也是Rab8的主要激活因子。
在這項研究中,研究人員構建了Rabin8重組體,在N端融合NanoLuc® 螢光素酶,C端融合HaloTag® 蛋白,這樣他們就能利用BRET作為蛋白構象的指示劑。同時,他們采用突觸融合蛋白-4(syntaxin-4)重組體作為陽性對照。之后在大腸桿菌中表達兩個重組體,并加入NanoBRET™ Nano-Glo® 底物,測定熒光。
通過比較Rabin8和Rabin8突變體的信號,研究人員確定磷酸化作用是Rabin8激活的一個重要機制。他們證實了Rabin8是ERK1/2響應EGF信號的一個直接磷酸化作用底物。在分子水平上,ERK1/2磷酸化Rabin8減輕了它的自抑制,由此促進了Rabin8的GEF活性。這項研究確定了Rabin8激活的一種分子機制。
關于NanoBRET™ 技術的更多文獻,以及詳細資料和報價,請點擊此處向Promega索取。(生物通 余亮)
參考文獻:
1. Juanfei Wang, Jinqi Ren, Bin Wu, et al., Activation of Rab8 guanine nucleotide exchange factor Rabin8 by ERK1/2 in response to EGF signaling, PNAS, 2015 112(1):148-53.